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标题: 细胞活性测定方法有哪些? [打印本页]

作者: doneast    时间: 2012-7-21 23:34
标题: 细胞活性测定方法有哪些?
材料与方法:
1、其细胞接种与MTT相同。
2、SRB用1%醋酸配成0.4%溶液。细胞在加药培养结束后用三氯醋酸(TCA)固定:贴壁细胞每个小孔加预冷的50%TCA液50ul(终浓度为10%)固定;悬浮细胞每孔加预冷的80%TCA50ul固定,加TCA时必须轻轻加在培养液表面,静置5分钟后再将平板移至4度放置1小时,这样可使悬浮细胞固定在培养孔的底部。
3、倒掉固定液,小孔用去离子水洗5遍,甩干,空气干燥。
4、每孔加如100ulSRB液,在室温放置10分钟。 细胞活性 未与蛋白结合的SRB用1%醋酸液洗5遍,空气干燥。
5、结合的SRB用150ul 10mmol/l非缓冲Tris碱液(ph10.5)溶解。
6、用自动化分光光度平板读数计在515nm波长处测定每个小孔的OD值。

本法用TCA固定细胞后,可随时用SRB作蛋白含量测定,不受测定时间的影响。SRB用tris溶解后也可稳定一个较长的时期。 TBE聚丙烯酰胺凝胶(电泳)   OD与SRB浓度作图时,在OD 单位1.5-2.0间为线性,当超出线形范围时,必须稀释后重新读数。

MTT操作过程中必须吸出细胞培养的上清液,使之比较费时及增加可能的误差,大量使用DMSO也不受欢迎。此外,OD值随时间变化也是一个较大的缺点。当然SRB法操作比MTT复杂一点,但是时间可以自己掌握,不受测试时间的限制。

网友[CindyGloria]:

Trypan Blue 台盼蓝排斥试验,比较适合原代培养的细胞。

原理:
细胞损伤或死亡时,台盼蓝可穿透变性的细胞膜,与解体的DNA 结合,使其着色。而活细胞能阻止染料进入细胞内。故可以鉴别死细胞与活细胞。还有其他燃料,如伊红Y和苯胺黑等。

用品:
1. 4%台盼蓝母液:称取4g台盼蓝,加少量蒸馏水研磨,加双蒸水至100ml,用滤纸过滤,4度保存。使用时。用PBS稀释至0.4%。
2. 吸管、血细胞计数板、显微镜

步骤:
1、制备单细胞悬液。并作适当稀释(10 *6 细胞/ml)
2、染色:取9滴细胞悬液移入小试管中,加1滴0.4%台盼蓝溶液,混匀。
3、计数:在三分钟内,用计数板分别计数活细胞和死细胞

结果:
镜下观察,死细胞被染成淡蓝色,而活细胞拒染。
根据下式求细胞活力:
活细胞率(%)= 活细胞总数/(活细胞总数+死细胞总数)*100

注意事项:台盼蓝染细胞时,时间不宜过长。否则,部分活细胞也会着色,会干扰计数。

台盼蓝主要用来鉴定原代培养细胞时,细胞分离后的存活情况,用0.4%台盼蓝直接染色,在显微镜下观察即可,活细胞不被染色。方便易用,因此在实验室中比较常用,尤其在心肌细胞原代培养中。

网友[lalala_2004]:

台盼兰染色法价格低廉,操作简单,又不用无菌操作,做这个实验只要是把显微镜调好了,细胞浓度调好了就不会有问题,是一个养细胞的入门实验,所以很适合初学者做。我做这个实验主要是用来确定抑制细胞增殖的药物浓度,排除浓度过大引起的毒性反应。

MTT性价比最高,操作上也不复杂但是也要注意一些地方:
1、刚开始做MTT 实验的时候,结果的稳定性及重复性不好,后来查资料发现,MTT实验的最后OD值要控制在0.75--1.25之间,这样才能保证数据有线性关系。在先控制好了合适的培养时间和细胞数后,所得到的数据还是令人满意的。
2、一定要保证每孔细胞数相同,这一点很重要,所以一定要充分混匀,边加边吹打,尽快加完。
3、尽量用新的96孔板,同时加样时注意准确,吸弃上清时,尽量小心,不要吸起沉淀,以减小误差。
4、血清浓度对MTT实验也有影响,尽量不高于5%,因为如果蛋白质含量高了,加入MTT反应后会有蛋白沉淀出现,最后的沉淀很难溶。
5、MTT试剂一定要注意避光,如果变绿了,就绝不能用了。

网友[细雨纷飞]:

改良MTT法在细胞活性测定中的应用:
原来的MTT法操作起来比较烦琐,要求技术熟练,但是结果的重复性比较差,因此我们在细胞增殖试验中采用了改良的MTT法,具体步骤如下:
1、细胞接种(96孔板),每孔100μl,细胞量2~5×104个(细胞数量将决定加入裂解液之后的孵育时间)。
2、根据聚体要求进行处理,处理物的量一般为10μl。
3、处理完之后直接加入10μlMTT,继续培养4小时。
4、直接加入裂解液100μl,裂解的时间由接种的细胞量决定,2~5×104个细胞,4小时可充分裂解,如果细胞数目比较大,就要延长孵育的时间。
(裂解液的配比:100ml的N,N-二甲基甲酰胺,100ml蒸馏水,30gSDS(十二烷基硫酸钠);搅拌待SDS充分溶解之后过滤,过滤得到的液体即可直接应用)
5、裂解完毕之后在振荡器上振荡10min,酶标仪测定。

本方法的方便之处是不要反复吸出液体,减少了操作不当影响结果,每次操作只要直接加入液体就可以了,但是加入的量要按上述说过的量,要不就会溢出孔外,重点是裂解液的配比。
作者: 花开留白    时间: 2012-7-24 11:14
好熟悉的感觉啊




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